为什么你的PCR产物总“隐身”,引物二聚体却异常明亮?


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PCR是分子生物学实验中的基本功,但越基础的实验,往往总能上演各种翻车问题。

今天小优要聊的就是一个经典问题:跑完PCR,满怀期待地跑胶,结果——目标条带无影无踪,底部却出现了异常明亮的二聚体条带!



01

 什么是引物二聚体?



首先,我们先来了解一下这个引物二聚体是什么。引物二聚体(Primer Dimer, PD)是PCR产物中常见的一种非特异性扩增条带。它通常位于凝胶底部(100bp以下),是由引物特异性结合并经DNA聚合酶介导的DNA扩增现象。



02

   为什么会出现明亮的引物二聚体条带?



当反应体系里目标基因扩增效率极低甚至为零时,PCR循环到后期,上下游引物便会互相配对,形成引物二聚体。由于引物通常很短,从而导致这种非特异性扩增效率极高,最终在胶图上呈现为一道亮眼的条带。



03

   遇到这种情况如何解决呢?



别慌!我们可以从以下几个方面逐一排查和优化:


1

模板质量与浓度



问题:模板降解或浓度过低/过高。


对策:检测模板纯度和浓度,必要时重新制备模板,并使用梯度稀释法摸索最佳模板浓度。


2

引物设计



问题:引物自身或引物之间存在互补序列,特别是3'末端互补。


对策:使用Primer Premier、Oligo等软件重新设计引物,确保引物特异性,避免非特异性结合导致引物二聚体的形成。


3

退火温度



问题:退火温度过低,导致引物与序列非特异性结合。


对策:通过温度梯度PCR摸索最佳退火温度,比如每次提高2-3℃。适当提高退火温度可增加特异性。


4

引物浓度



问题:引物浓度过高,容易导致引物之间互相结合。


对策:适当降低引物浓度(例如从0.5μM降至0.2μM),但注意不要过低以免影响扩增效率。


5

循环次数



问题:循环次数过多,扩增进入平台期后易产生非特异性产物。


对策:适当减少循环次数(通常25-35个循环为宜)。


6

试剂问题



问题:PCR预混液或酶失活。


对策:更换新的PCR试剂,确保酶活性。


7

阳性对照



设置阳性对照是PCR实验中至关重要的一个步骤,它可以帮助确定是模板问题还是反应体系问题,让实验结果更有说服力和可靠性。




总结一下


PCR出现引物二聚体且无目的条带是一个常见问题,多数情况下通过优化引物设计、调整退火温度、降低引物浓度等措施可以解决。


以后如果再次在胶图上看到那抹耀眼的二聚体亮带,不妨按照以上清单逐一排查,相信你一定能找到问题所在,让目标条带「重见天日」!


祝大家



每次实验都有漂亮的目的条带,完美的数据!


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